admin 管理员组文章数量: 1184232
2024年3月6日发(作者:url编码教程大全)
第
27
卷第
4
期2020年12月寄生虫与医学昆虫学报Acta
Parasitol.
Med.
Entomol.
.
27,
No.
4Dec.
,
2020doi:10.
3969/.1005-0507.
2020. 04.
004三带喙库蚊微卫星标记的筛选及遗传多样性分析褚宏亮1吴治明1田野1高剑2周明浩g
赵彤言2*
*(1.江苏省疾病预防控制中心,江苏南京210009
;
2.军事科学院军事医学研究院微生物流行病研究所,
病原微生物生物安全国家重点实验室,北京市虫媒病与自然疫源性疾病重点实验室,北京100071)摘要为了便于对我国三带喙库蚊种群的遗传结构和多样性进行动态检测,本研究利用磁珠富集法进行三
带喙库蚊微卫星标记的开发和筛选,共获得40个微卫星位点,且位点的多态性验证结果表明:有24个位
点在不同三带喙库蚊地理株间呈现多态性。微卫星位点的遗传多样性分析结果表明:各位点的平均多态信
息含量(PIC)和香农指数(SI)均较高,其中位点P17最高(PIC
=
0.853,
SI
=
2.
281),最低的为位点
P40
(PIC =
0.
503,
SI=1.
195),都属于高度多态性位点,适用于后续三带喙库蚊种群遗传多样性及遗传结
构的研究。关键词三带喙库蚊;日本脑炎病毒;磁珠富集法;微卫星标记;遗传多样性三带喙库蚊Culex
tritaeniorhynchus是亚洲的
常见蚊种,能够传播多种虫媒病毒,如裂谷热病
毒、西尼罗病毒和登革热病毒等,更是日本脑炎
法进行三带喙库蚊微卫星标记的开发,
同时对所
得的遗传标记进行遗传多样性评估。病毒(Japanese
encephalitis
,
JE)的主要传播媒
1
材料与方法1.1蚊虫采集2015年7—8月,在江苏省16个不同地区
介(Self
et
al.
,
1973)O三带喙库蚊偏向孳生于
富含植物的水体中,其中稻田是其主要孳生地
(李春晓等,2007)。中国作为一个粮食大国,
在过去的几十年中,水稻的种植范围在全国范围
猪圈、牛棚或稻田等适宜区域,采用诱蚊灯法或
二氧化碳诱蚊灯法进行三带喙库蚊采集,采集时
内大幅度地增长,成为了世界第二大粮食种植基
地(Ghose,
2014)。由此,引起的三带喙库蚊种
群密度的增长也引起了人们对相关虫媒传染病流
间为6:
00
pm~8:
00
pm。采集完成后用乙醚麻
醉并分类鉴定。最后将挑选的三带喙库蚊按地区
行的担忧。微卫星标记(simple
sequence
repeats,
SSRs)是一类广泛存在于原核和真核生物基因
编号后放入-70T冷冻保存,用于后续的基因组
提取。1.2实验试剂和仪器组非编码区中的短重复序列,该序列一般由6个
实验试剂:Qiagen
blood
and
tissue
kit
(69504)、Taq
酶(Takara)、EcoR
I、Mse
I、
以内碱基组成,且由于序列在不同个体中重复次
数的差异而表现出高度的多态性(Vieira
et
al.,2016)。目前,对于埃及伊纹Aedes
aegypti、白纹
MagneSphere
Magnetic
Separation
Products
kit
(Promega)、用生物素标记的探针(AG
)
l5和
(GT),无水乙醇以及琼脂糖等。伊蚊Aedes
albopictus和尖音库蚊复合组Culex
pipiens
Complex微卫星标记的研究等均有大量报
实验仪器:超净工作台(SW-CJ-1D)、全自
动制冰机(SANYO
SIM-F14)、立式自动电热压
力蒸汽灭菌锅(LDZX-40B)、高速台式冷冻离
道,而在三带喙库蚊研究方面仍为空白(Julie
et
al.
,
2005;
Lovin
et
al.
,
2009;
Renke
et
al.
,
2020)。为便于今后开展三带喙库蚊种群的遗传
心机(TGL-16G)、电泳仪(DYY-6B)、凝胶
成像分析仪(GELl-D0C2000)、Bio-Rad
PCR
扩结构和多样性的动态检测,本研究应用磁珠富集
收稿日期:
2020-09-08*基金项目:江苏省青年医学人才(QNRC2016544);江苏省卫生健康委面上课题(H2018103)**
通信作者:E-mail:周明浩
zmh@
;赵彤言
tongyangzhao@
・218・
褚宏亮等:三带喙库蚊微卫星标记的筛选及遗传多样性分析增仪、3730XL
测序仪(Applied
Biosystems,
USA)
等。pL)
,
6
pL
Solution
I,于16C连接过夜。而后
将12
pL连接产物加入150
pL感受态细胞于
42C水浴中热激90s,迅速移入冰中,静置5
1.3三带喙库蚊基因组提取及质量检测随机选取5个地理株用作微卫星引物开发及
多态性验证。蚊虫基因组提取按照DNA提取试
min,加入900
pL
LB培养液,放入37C恒温箱
摇床,150
r/min培养1
h。分别取100、200、
300以及400
pL恢复培养液涂于含氨卞青霉素
剂盒的说明书进行(Shi
et
al.,
2017),而后用1.
5%的琼脂糖凝胶电泳和Nanodrop核酸检测仪
的LB培养皿上,倒置于37C培养过夜。用
pMD18-T
载体的通用引物
M13-47
(CGCCAGGG
TTTTCCCAGTCA-CGAC)或
RV-M
(GAGCGGAT
分别对三带喙库蚊基因组DNA的完整性、浓度
以及纯度进行检测。1.4三带喙库蚊SSR引物开发和验证1.4.1基因组酶切和接头连接在37C下利用限
制性内切酶EcoR
I和Mse
I对三带喙库蚊基因
组DNA进行双酶切处理,处理时间为3
h,酶切
体系为50
pL,其中包含基因组DNA
1
pg、10x
T4
DNA
ligase
Buffer
5
pL、EcoR
I
(
10
U/pL)
1
pL以及Mse
I
(10
U/pL)
1
pL,剩余部分用
水补齐。基因组酶切产物与EcoR
I接头和Mse
I
接头于4C连接过夜,连接体系为20
pL,其中
包括酶切产物7
pL,
EcoR
I接头75
pmol、Mse
I
接头
75
pmol、T4
DNA
ligase
1.5
U、10xT4
DNA
ligase
Buffer
2
pL
以及
ddH2O
10.
5
pL。1.4.2
连接产物的预扩增PCR扩增体系为20
pL,
含连接接头的酶切
DNA
2
pL、
2xPCRmix
10
pL、E00
10
pmol、M00
10
pmol、Taq
酶
0.2
U,
其他用水补齐。PCR反应程序为:94C预变性5
min;
94C变性
45
s、50C退火
45
s、72C延伸
45
s、30次循环;72C延伸10
min;
4C保存。1.4.3
(AG),5和(GT)"探针杂交和磁珠捕捉
用生物素标记的探针(AG)15和(GT)15进行杂
交:将200
pmol探针与100
pL
PCR产物在沸水
中变性5
min后,立即置于冰上10
min,加入2.5
pL
20xSSC混合液,在62C水浴锅中杂交
30
min,取出于室温冷却。将杂交混合液和平衡
好的磁珠混匀,在室温放置10
min,每2~3
min
轻轻摇动一下,使生物素充分吸附在包被亲和素
的磁珠上,而后用0.
1
xSSC清洗磁珠4次,最
后加入100
pL灭菌ddH2O进行洗脱。1.4.4富集产物的扩增、克隆以及阳性克隆的
筛选富集产物扩增反应程序为:94C变性45
s,
50C退火45
s,
72C延伸45
s,循环5次;72C
延伸10
min;
4C保存。扩增产物纯化并冷冻干
燥浓缩至约6
pL,产物与pMD18-T
(TaKaRa,
D103
A)载体连接,连接体系为12
pL,其中含5.5
pL
PCR
产物,1
pL
pMD18-T
载体(50
ng/
AACAATTTCACACAGG)分别与重复序列
(AG"组成的双引物对AG富集文库菌落进行筛
选检测。反应程序为:94C预变性10
min;
94C
变性45
s,
58C退火45
s,
72C延伸45
s,循环
33
次;72C延伸
10
min,
4C保存;取5
pL
PCR
产物用于2%琼脂糖凝胶电泳检测,对扩增出清
晰电泳条带的菌落进行质粒测序。1.4.5序列分析和SSR引物筛选利用Chromas
软件对序列峰图进行手工校正,并筛选出含有
SSR位点的序列。而后利用DNAman软件去除载
体和接头序列,
CodonCode
Aligner
软件进行序列
比对分析,去除重复序列后,用Primers
5.
0软
件进行SSR引物设计。采用丙烯酰胺凝胶电泳
(PAGE)对初筛合格引物进行复筛,检测样本
数量为5,筛选具有扩增多态性的引物为复筛合
格引物。2结果2.1三带喙库蚊基因组检测三带喙库蚊基因组DNA的电泳结果显示:
基因组DNA条带单一且明亮,同时,基因组
DNA的吸光度值检测结果显示:所有检测样本
DNA的OD260/280值均位于1-6-2.0之间,且
DNA浓度值为60~100ng/pL,这表明本研究提
取的三带喙库蚊基因组较完整且浓度较高;
基因
组DNA双酶切产物的电泳图呈现弥散状,这表
明获得的SSR短基因组DNA质量适合后续的实
验(图1)。2.2微卫星位点检测和多态性验证本实验共挑选了
100个阳性克隆进行测序
(图2-a),测序结果经SSR
Hunter软件分析共获
得了
40个含有微卫星位点的序列,这些微卫星
位点的PAGE多态性验证结果表明:有24个位
点在不同三带喙库蚊地理株间呈现高度的多态
-219
-
寄生虫与医学昆虫学报第27卷第4期性,这些位点引物的GenBank登记号为:
MW340914
〜MW340937
(图
2-b~f,表
1)。0.823之间,平均观察杂合度为0.653,而期望
杂合度(He)在0.530〜0.857之间,平均期望
2.
3微卫星位点遗传多样性分析本研究从24个微卫星多态性位点中选取10
杂合度为0.752。各位点的平均多态信息含量
(PIC)和香农指数(SI)结果基本一致,其中
P17
最高(PIC
=
0.853,
SI
=
2.
281),最低的为
个进行了遗传多样性评估,结果表明:这些位点
的等位基因数(Na)在9〜27之间,平均等位
基因数为18;观察杂合度(Ho)在0.437〜
P40
(PIC
=
0.
503,
SI=
1.
195),都属于高度多
态性位点
(
表
2)
。图1三带喙库蚊基因组和基因组酶切产物电泳图Fig.
1
Genomic
DNA
and
restriction
enzyme
digested
genomic
DNA
electrophoresis
maps
of
Cx.
tritaeniorhynchus
1-5:三带喙库蚊5个地理株的基因组DNA;
6-7;三带喙库蚊基因组酶切产物;M:
DL
2000.1-5
:
Genomic
DNA
of
five
different
Cx.
tritaeniorhynchus
samples;
6-7
:
Restriction
enzyme
digested
genomic
DNA;
M:
DL
2000.表1三带喙库蚊微24个卫星位点及序列信息Tab・
1
Details
on
24
pairs
of
microsatellite
loci
and
their
sequences
in
Cx.
tritaeniorhynchus引物名称PrimerP1正向序列Forward
(5f)反向序列Reverse
(5V)重复基元Motif片段大小Fragment
size
(
bp)GenBank登记号GenBank
340914ATCACTGTTGTAAAGTATGCATGACGACTAAAATGTTTGAGTGTGGTCCCACCATACTCACCG(
CT)
9(TC)1211013099P2P4P5AATGAGCAACGATTGTTCCCGAAGCACCCCAACGAATGACACGATGAAAGCACAGACGAAGGGMW340915MW340916AATTCCAAGCCTGAAACCTAATTGAGGGGTGTTGTTGGAGAG(
CT)
9(CT)
17(TC)10(TC)13184127MW340917MW340918MW340919P6P7P8ATTGCTAACCGAGTGACACAACCTTCATCTCTCCCATTCCAACGACGACAACAAACGAAAGAGCGACGACCACCTGAGTTTACA163TCTTCTCTTGGTGTTGGTGTCACTTCCTTCATTCCCGGCGTCATCGATTGAATTTTTGTTTGA(CT)
13(CT)
17(TC)1MW340920P9AACGTGTGGCTTGGCCAGTCTMW340921MW340922P11P13AGAAACAATCGCAAGCCAACACACCTTCTTTCTTTCTCTCTGGGCACCCGCCAAAAGGACAAATGAATGTGTTGATTTTTGTCT(CT)
12(CT)
MW340923MW340924P16P17CCGGAACGAGTTGGTTTTATTGTTATTTTGATCGCCGAAGGGAGGCAGAACATTCAATCAGGTCAAGTACGTGTGTGTGTTGGTGGTAATCACAACACATCCGAGAGGTGGGTATGAGAGGTGAGGTTTC(GA)
14(
CT)
6MW340925MW340926P19P22122135TGGTTTTGTTGGCAGTTGTCTACCGCAATCTCTCTGTCTAACACAAAGAGACGTCCTGTGTGCACCTACTAAATACTGGCACTGGCTGTCAGCCGTGAATCATTCTTCACCAACACAAACACTCACT(GT)
6(
GTC)
6MW340927MW340928MW340929P23P24129113195AAATGAGCGACACCTGGCGAAG(GT)
6(GT)
7(GT)6CTGTP25TAAAAATACAAAACTCGCACAMW340930P31P32TGACAATGGTGGTAGAGAGCAGAGCATAATAAACAAGTGTCTGTGCCAGACACGTGTGCCACCACTGGAGATGGCAAACTGCAGGCTCTCTCTCAAATCTGAACACATTCCACTGACAAGAGAGCCCC106MW340931MW340932(GT)
6(GT)
8(
GT)
100137P33P34MW340933MW340934GAATTCCACCGTGATGTCGTGAAACCCCCTGAAACACATTGAP35P38AACTGAGTGTGGTGTAGGTTGAGCATTTAGCCGTCTTCCTTTTATTAGCCGCTCTTGTCCGAAAAATTCCGGAAGTGTGTTTATGCTTTATGTCTCGGGATTTTGTT(TG)7MW340935MW340936(GT)
7(TG)8P40ATCCACCCGCTCCACTACTCT180MW340937-220
-
褚宏亮等:三带喙库蚊微卫星标记的筛选及遗传多样性分析bp5⑻•
300200J180-
・
160,140孔.120ci
100P17
P19
P22
P23
P24
P25bp340P29
P30
P31
P32
P33P34bp500400300;200
|•
180
1・160・;140
=112图2三带喙库蚊微卫星位点多态性验证Fig.
2
Verification
of
microsatellite
locus
polymorphism
in
Cx.
tritaeniorhynchusa:阳性克隆电泳筛选;b~f:各微卫星位点的PAGE胶电泳图;P1~P40为微卫星位点编号;M:
DNA
marker.
a:
Electrophoresis
screening
of
positive
clones;
b-f:
Polyacrylamide
gel
electrophoresis
of
each microsatellite
locus;
P1-P40:
Microsatellite
locus
number;
M:
DNA
marker.表2三带喙库蚊10个微卫星位点遗传多样性分析Tab・ 2
Genetic
diversity
analysis
of
ten
microsatellite法有很多,如磁珠富集法和咼通量测序法。而相
比于高通量测序法,传统的磁珠富集法在兼具准
确度高的同时,费用相对低廉且操作简单
(Senan
et
al.
,
2014),因此本研究选用该法进行
loci
in
Cx.
tritaeniorhynchus引物
名称PrimerP1等位基因数Na香浓
指数SI1.973观测杂
合度Ho0.7820.7820.
757期望杂
合度He0.
8330.
8100.
7780.
7500.
7520.
7600.
8570.
756多态信
息位点PIC微卫星位点的开发。16270.
8110.
7870.
7440.
7380.
7370.
7360.
8530.718多态信息位点值(PIC)最早由Botstein等
(1980)提出,用以评估微卫星位点多态性的高
P22.
0061.7311.9851.723P6P71524低,以确定其是否适用于种群遗传连锁分析。而
根据Ditta等(2018)对于PIC值的判定,本研
究测试的10个微卫星位点均呈现高度多态性,
0.6370.
597P9151924P11P171.7810.7120.
8232. 2811.5311.538即PIC>0.
50;同时,基于微卫星位点的三带喙
库蚊杂合度分析结果也表明:这10个微卫星位
P19P32P409160.5330.
4650.
4370.6980.
5300.
7520.67113181. 1951.7740.
5030.
730点能够准确地分辨种群观测杂合度(Ho)和期
望杂合度(He)的差异,从而评估三带喙库蚊
Mean0.653种群结构受外来选择和近交等因素影响的大小
3讨论在传统研究中,研究人员常通过文献和相关
数据库检索以及近缘物种交叉扩增的方法获取微
卫星引物,然而,对于三带喙库蚊微卫星位点研
(孙洁茹等,2011)。因此,本研究开发的三带喙
库蚊微卫星位点能够适用于后续三带喙库蚊种群
遗传多样性及遗传结构研究。参考文献Botstein D,
White
RL,
Skolnick
M
et
al.
Construction
of
a
genetic
究仍为空白。因此,为了获得高效的微卫星位
点,
本研究从基因组出发,
进行三带喙库蚊微卫
linkage
map
in
man
using
restriction
fragment
length
polymorphisms
[
J]. Am
J Hum Genet.
,
1980,
32:
A, Zhou
Z,
Cai
X
et
al.
Genome-wide
mining
and
星位点的重新开发。目前,微卫星位点开发的方
-221 -
寄生虫与医学昆虫学报characterization
of
SSR
markers
for
gene
mapping
and
gene
diversity
in
Gossypium
barbadense
L.
and
Gossypium
darwinii
G.
第
27
卷第
4
期81:
1
567-1
LS,
Shin
HK,
Kim
KH
et
al.
Ecological
studies
on
Culex
wTatt
accessions
[J].
Agronomy,
2018,
8
(9):
niorhynchus
as
a
vector
of
Japanese
encephalitis
[
J
]
.
Bull
World
Health Organ.
,
1973,
49
(1):
41
-
B.
Food
security
and
food
self-sufficiency
in
China: from
past
to
2050
[J].
Food
Energy
Secur.
,
2014,
3
(2):
LS,
Nusha
K,
Micheal
AM
et
al.
Cross-species
comparison
of
Senan
S,
Kizhakayil
D,
Sasikumar B
et
al.
Methods
for
development
of
microsatellite
markers:
An
overview.
Notulae
ScientiaBiologicae,
2014,
6
(1):
atellite
loci
in
the
Culex
pipiens
complex
and
beyond
[
J]
.
Mol Ecol
Notes.
,
2005,
5
(3)
:
QM,
Zhang
HD,
Wang
G
et
al
The
genetic
diversity
and
Li
CX,
Guo
XX,
Huang
EJ
et
al.
Discovery
of
new
breeding
sites
ofCulex
tritaeniorhynchus
in
the
city
[
J].
Chin
J
Vector
Biol
population
structure
of
domestic
Aedes
aegypti
(
Diptera:
Culicidae)
in
Y
unnan
Province,
southwestern
China
[ J
].
Parasites
Vectors,
2017,
10:
l.,
2007,
18
(
1
):
31.[李春晓,郭晓霞,黄恩炯,
等.城市中三带喙库蚊新孳生地的发现[J].中国媒介生物
学及控制杂志,2007,
18
(
1)
:
31.]Lovin
DD,
Washington
KO,
Debruyn
B
et
al.
Genome-based
Sun
JY
,
Li
Y
,
Yan
S
et
al.
Microsatellite
marker
analysis
of
genetic-
diversity
of
Cacopsylla
chinensis
[
J].
Acta
Entomol
Sinica.,
2011,54
(7):
820-827.[孙洁茹,李燕,闰硕,等.微卫星
polymorphic
microsatellite
development
and
validation
in
the
mosquito
Aedes
aegypti
and
application
to
population
genetics
in
标记分析中国梨木虱种群的遗传多样性[J].昆虫学报,
2011,
54
(7)
:
820-827.]Haiti
[J].
BMC
Genomics,
2009,
10:
ML,
Santini
L,
Diniz
AL
et
al.
Microsatellite
markers:
what
Renke
L,
Anna
H,
Stephanie
J
et
al. Microsatellite
typing
of
Aedes
they
mean
and
why
they
are
so
useful
[
J].
Genet
Mol
Biol.,
2016,
39
(3)
:
ctus
(
Diptera:
Culicidae
)
populations
from
Germany
suggests
regular
introductions
[ J].
Infect
Genet
Evol.
,
2020,ISOLATION
AND
GENETIC
DIVERSITY
ANALYSIS
OF
MICROSATELLITE
MARKERS
IN
CULEX
TRITAENIORHYNCHUS
(DIPTERA:
CULICIDAE)CHU
Hong-Liang1
WU
Zhi-Ming1
TIAN
Ye1
GAO
Jian2
ZHOU
Ming-Hao1*
ZHAO
Tong-Yan2*(1.
Center
for
Disease
Control
and
Prevention,
of
Jiangsu
Province,
Nanjing
210009,
China
;2.
Beijing
Key
Laboratory
of
Vector
Borne
and
Natural Infectious
Disease,
State
Key
Laboratory
of
Pathogen
and
Biosecurity,
Institute
of Microbiology
and
Epidemiology,
AMMS,
Beijing
100071,
China)Abstract
To
monitor
the
dynamic
changes
of
genetic
diversity
and
population
structure
of
Culex
tritaeniorhynchus
populations
in
China,
a
total
of
40
microsatellite
loci
were
developed
from
its
genome
via
Magnetic
Beads
Enrichment
method.
The
polymorphism
verification
result
showed
that
24
loci
of
all
displayed
polymorphic
among
Cx.
tritaeniorhynchus
populations
from
different
geographic
regions.
Meanwhile,
genetic diversity
analysis
results
of
these
microsatellite
loci
showed
that
both
of
the
average
polymorphic
information
content
(PIC)
and
Shannon
index
(SI)
of
these
loci
were
high,
with
the
highest
one
was
locus
P17
(
PIC
=
0.
853
,
SI
=
2.
281
)
and
lowest
one
was
locus
P40
(
PIC
=
0.
503
,
SI
=
1.
195
).
Therefore,
these
new
developed
microsatellite
loci
are
suitable
for
the
subsequent
study
of
the
genetic
diversity
and
population
structure
of
Cx.
words
Culex
tritaeniorhynchus
;」apanese
encephalitis
virus
;
Magnetic
beads
enrichment
method
;
Microsatellite
marker
;
Genetic
diversityCorresponding
authors
・222・
版权声明:本文标题:三带喙库蚊微卫星标记的筛选及遗传多样性分析 内容由网友自发贡献,该文观点仅代表作者本人, 转载请联系作者并注明出处:http://www.roclinux.cn/b/1709722996a544222.html, 本站仅提供信息存储空间服务,不拥有所有权,不承担相关法律责任。如发现本站有涉嫌抄袭侵权/违法违规的内容,一经查实,本站将立刻删除。
发表评论